Vol. 6 (11) pp. 518-525 DOI: 10.21474/IJAR01/8026

CUSCUTA AUSTRALIS AU BURKINA FASO : POTENTIELS HOTES ET DUREE DE SON CYCLE BIOLOGIQUE EN CONDITIONS DE SERRE.

  • Institut de Recherche en Sciences Appliqu?es et Technologies, D?partement Substances Naturelles, 03 BP 7047 Ouagadougou 03.
  • Institut de l?Environnement et de Recherches Agricoles, 04 B.P. 8645 Ouagadougou 04, Burkina Faso.
  • Universit? Ouaga. 1 Pr Joseph Ki-Zerbo, Unit? de formation et de recherche en sciences de la vie et de la terre, B.P. 7021, Burkina Faso.
15 Downloads 137 Views
Crossref

Abstract

Le genre Cuscuta de la famille des Convolvulaceae comporte environ 150 esp?ces herbac?es liano?des commun?ment appel?es cuscutes et infestent les plantes tant sauvages que cultiv?es. Cuscuta australis R. Br. est la seule cuscute existant au Burkina Faso. L?objectif principal de cette ?tude est d?identifier les principaux facteurs qui interviennent dans l?accomplissement du cycle biologique de Cuscuta australis. Un inventaire des esp?ces v?g?tales h?tes de la cuscute dans des parcelles cultiv?es dans la ville de Ouagadougou et une culture de la plante parasite en conditions de serre ont ?t? r?alis?s. L?inventaire a permis de d?nombrer 43 plantes h?tes dont 16 esp?ces cultiv?es et 27 esp?ces sauvages. Ces plantes rel?vent de 37 genres et de 21 familles. Les plantes de Cuscuta australis cultiv?es seules en conditions de serre sont mortes au bout de 31 jours apr?s semis (JAS). Cependant, en pr?sence d?une plante h?te, la plantule de la cuscute a ?tabli un contact parasitaire 13 JAS, suivi de d?g?n?rescence de la racine et la formation de l?haustorium. La floraison et la fructification sont intervenues respectivement 65 et 77 JAS. Cette ?tude permet de conclure que Cuscuta australis, parasite obligatoire et polyphage serait r?pandue au Burkina Faso. Des ?tudes pour d?terminer la distribution g?ographique du parasite sur l?ensemble du territoire burkinab? ainsi que l??valuation des pertes de rendements agricoles caus?es par cette esp?ce et la recherche de m?thodes de lutte sont n?cessaires.

Keywords

How to Cite This Article

Sawadogo/Ilboudo T. C, Yonli D, Traor H and Boussim I J. (2018); CUSCUTA AUSTRALIS AU BURKINA FASO : POTENTIELS HOTES ET DUREE DE SON CYCLE BIOLOGIQUE EN CONDITIONS DE SERRE., International Journal of Advanced Research (IJAR), 6 (11), 518-525, ISSN 2320-5407. DOI: https://doi.org/10.21474/IJAR01/8026

Corresponding Author

Sawadogo I
Institut de Recherche en Sciences Appliquées et Technologies, Département Substances Naturelles, 03 BP 7047 Ouagadougou 03.

Article Analytics

References

  1. Auric, G. (2009)?: Le Petit herboriste. Les 140 plantes m?dicinales d?Europe. 160 p.
  2. Benvenuti, S., Dinelli, G., Bonetti, A and Catizone, P. (2005): Germination ecology, emergence and host detection in Cuscuta campestris. Weed Research, 45 (4):270?278.
  3. Collin, F. and Pelissou, J.-L. (1994). Luzerne. Ma?triser la cuscute, c?est possible. Bulletin semences hiver, 126: 25-28.
  4. Dawson, J. H., Musselman, L. J., Wolswinkel P. and D?rr, I. (1994). Biology and control of Cuscuta. Rev. Weed Sci. Soc. Am., 6: 265-317.
  5. Ghantous, K. M. and Sandler, H. A. (2012). Mechanical Scarification of dodder Sseeds with a handheld rotary tool. Weed Technology, 26: 485?489.
  6. Johnson, B. I., De Moraes, C. M. and Mescher, M. C. (2016). Manipulation of light spectral quality disrupts host location and attachment by parasitic plants in the genus Cuscuta. Journal of Applied Ecology, 53 (3): 794?803.
  7. Lanini W.T. and Kogan M., 2005. Biology and Management of Cuscuta in Crop. Ciencia e Investigacion Agraria. 3. (32): 165-179.
  8. Li, D., Wang, L., Yang, X., Zhang, G. and Chen, L. (2010). Proteomic analysis of blue light-induced twining response in Cuscuta australis. Plant Mol Biol, 72: 205?213.
  9. Li, J., Yang, B., Zhang, J., Yan, M., and Li, M. (2015). Effects of a native parasitic plant on an exotic invader decrease with increasing host age. AoB Plants Advance Access: 1?31.
  10. Mishra, J. S. (2009). Biology and management of Cuscuta Indian J. Weed Sci., 41 (1&2): 1?11.
  11. Narayana Rao K and Rao R. S. N. (1991). Studies on tolerance of black gram and green gram varieties to dodder (Cuscuta chinensis). Proceedings of the 5th International symposium of parasitic weeds. Nairobi, Kenya, pp. 170-175.
  12. Saric-Krsmanovic, M. and Vrbnicanin, S. (2015). Field dodder - how to control it? Pestic. Phytomed. (Belgrade), 30(3): 137?145
  13. Seyyedi, M., Moghaddam, P. R., Shahriari, R., Azad, M. and Rezaei, E. E. (2013). Allelopathic potential of sunflower and caster bean on germination properties of dodder (Cuscuta compestris). African Journal of Agricultural Research, 8(7): 601?607.
  14. Sherman, T. D., Bowling, A. J. C., Barger, T. W. and Vaughn, K. (2008). The Vestigial Root of Dodder (Cuscuta pentagona) seedlings. International Journal of Plant Sciences, 169 (8): 998?1012.
  15. Zaroug, M. S., Zahran, E. A. B., Abbasher, A. A. and Aliem, E. A. A. (2014). Post-attachment herbicide treatment for controlling field dodder (Cuscuta Campestris Yuncker) parasitizing onion in Gezira State. Int. J. Pharma Bio Sci., 3(5): 123?127.
  16. Zhang, D., Qi, J., Yue, J., Huang, J., Sun, T., Li, S., Wen, J.-F., Hettenhausen, C., Wu, J., Wang, L., Zhuang, H., Wu, J. & Sun, G. (2014). Root parasitic plant Orobanche aegyptiaca and shoot parasitic plant Cuscuta australis obtained Brassicaceae-specific strictosidine synthase-like genes by horizontal gene transfer. BMC Plant Biology, 19:1-14.

Similar Articles